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GuíaReconstitución de péptidos: cómo reconstituir paso a paso
La reconstitución de péptidos es el paso de disolver un péptido liofilizado en un solvente para obtener una solución de concentración conocida, y se hace con técnica aséptica y con un volumen que se calcula, no que se estima.
Qué es la reconstitución de péptidos
Un péptido llega como liofilizado, un sólido seco y estable. Reconstituirlo es devolverlo a solución: se añade un volumen conocido de solvente al frasco, se disuelve el sólido y se calcula la concentración resultante. A partir de ese momento el péptido está expuesto a las vías de degradación de péptidos en solución, y por eso cada paso importa.
Esta guía describe el procedimiento de laboratorio. No incluye dosis, ni pautas de uso, ni conversiones a unidades de jeringa: el volumen de solvente y el plazo de uso de una solución los fija el protocolo del ensayo.
Elegir el solvente
Lo fija el protocolo. Los dos más usados son el agua estéril y el agua bacteriostática, que lleva alcohol bencílico al 0,9 % como conservante. Para un ensayo con células, el alcohol bencílico puede no ser compatible, y el protocolo, no el catálogo, decide. Si el péptido tiene una particularidad, su ficha la dice: el complejo GHK-Cu, por ejemplo, forma una solución azulada y su cobre puede desplazarlo un quelante como el EDTA.
El pH y la concentración influyen en la estabilidad física de un péptido en solución, y también la agitación y las superficies con las que toca. 1
Técnica aséptica, paso a paso
- Deja que el frasco liofilizado y el solvente estéril lleguen a temperatura ambiente.
- Desinfecta los tapones de goma de ambos con alcohol isopropílico al 70 %.
- Mide el volumen de solvente que fije el protocolo.
- Haz caer el solvente despacio por la pared de vidrio, sin dirigirlo al polvo.
- Gira el frasco con suavidad hasta que el sólido se disuelva por completo. No lo agites.
- Calcula la concentración y anótala en la etiqueta, con el solvente, el volumen y la fecha.
- Guarda la solución en refrigeración, de 2 a 8 °C, sin agitarla ni exponerla a cambios de temperatura.
Calcular la concentración y la molaridad
La concentración en mg/mL es la masa declarada de péptido del frasco dividida entre el volumen de solvente; es una cifra nominal, porque el polvo lleva además agua y contraiones (pureza de un péptido). La molaridad se obtiene dividiendo esa concentración entre la masa molecular y multiplicando por 1 000, lo que da mmol/L. Si el frasco tiene 10 mg y se añaden 2 mL, la concentración es de 5 mg/mL, y la molaridad depende de la masa de cada péptido, como muestra la tabla.
| Molécula | Masa molecular | Concentración | Molaridad |
|---|---|---|---|
| Retatrutide 10 mg | 4 731 Da | 5 mg/mL | 1,06 mmol/L |
| Tirzepatida 10 mg | 4 813,5 Da | 5 mg/mL | 1,04 mmol/L |
| GHK-Cu (ejemplo; se vende en 50 y 100 mg) | 402 Da | 5 mg/mL | 12,44 mmol/L |
| BPC-157 10 mg | 1 419,5 Da | 5 mg/mL | 3,52 mmol/L |
| TB-500 10 mg | 889,0 Da | 5 mg/mL | 5,62 mmol/L |
| Ipamorelin 10 mg | 711,9 Da | 5 mg/mL | 7,02 mmol/L |
| Tesamorelin 10 mg | 5 135,9 Da | 5 mg/mL | 0,97 mmol/L |
| Epitalon 10 mg | 390,3 Da | 5 mg/mL | 12,81 mmol/L |
| Selank 10 mg | 751,9 Da | 5 mg/mL | 6,65 mmol/L |
| AHK-Cu (ejemplo; se vende en 50 mg) | ≈ 416 Da | 5 mg/mL | 12,02 mmol/L |
| Somatropina 10 mg | 22 125 Da | 5 mg/mL | 0,23 mmol/L |
| MOTS-c 10 mg | 2 174,6 Da | 5 mg/mL | 2,30 mmol/L |
| NAD+ (ejemplo; se vende en 500 mg) | 663,4 Da | 5 mg/mL | 7,54 mmol/L |
| Glutatión (ejemplo; se vende en 600 mg) | 307,3 Da | 5 mg/mL | 16,27 mmol/L |
| Semax (ejemplo; se vende en 5 mg) | 813,9 Da | 5 mg/mL | 6,14 mmol/L |
| Bremelanotida 10 mg | 1 025,2 Da | 5 mg/mL | 4,88 mmol/L |
| Melanotan 2 10 mg | 1 024,2 Da | 5 mg/mL | 4,88 mmol/L |
| Kisspeptina-10 10 mg | 1 302,4 Da | 5 mg/mL | 3,84 mmol/L |
| Melanotan 1 10 mg | 1 646,8 Da | 5 mg/mL | 3,04 mmol/L |
Cálculo con la masa molecular de cada ficha; la masa de los complejos de cobre de GHK-Cu y AHK-Cu es aproximada. NAD+ no es un péptido, la somatropina es una proteína y el glutatión une sus residuos por un enlace γ, pero la cuenta es la misma. El volumen de solvente de cada ensayo lo fija su protocolo.
En una mezcla, cada péptido tiene su propia concentración: un frasco de CJC-1295 + ipamorelin de 10 mg (5 + 5) en 2 mL da 2,5 mg/mL de cada uno, unos 0,742 mmol/L de CJC-1295 sin DAC y 3,51 mmol/L de ipamorelin, y la ficha de cada mezcla trae su cuenta. En una sal, como 5-Amino-1MQ, la molaridad depende de si los miligramos declarados son del catión o de la sal con su contraión.
Para otros volúmenes y presentaciones, la calculadora de concentración hace la cuenta y la muestra paso a paso.
Qué evitar al reconstituir un péptido
- Agitar el frasco. La agitación favorece la agregación y la formación de espuma en la interfaz; un giro suave basta. 1
- Suponer un volumen. Una concentración estimada y no calculada hace imposible repetir un ensayo.
- Mezclar la guía con una pauta de uso. El volumen y el plazo de uso salen del protocolo del ensayo, no de una tabla de este sitio.
Preguntas frecuentes
¿Con qué se reconstituye un péptido liofilizado?
Con el solvente que fije el protocolo: agua estéril, agua bacteriostática u otro diluyente. Para un ensayo celular, el alcohol bencílico de la bacteriostática puede ser incompatible.
¿Cómo se calcula la molaridad de un péptido reconstituido?
Se divide la concentración en mg/mL entre la masa molecular en Da y se multiplica por 1 000, lo que da mmol/L.
¿Cuánto dura un péptido reconstituido?
Lo fija el protocolo del laboratorio: depende de la secuencia, el pH, la temperatura, la agitación y las superficies. 1 La solución se guarda en refrigeración y se anota la fecha.
Referencias científicas
- Zapadka KL, Becher FJ, Gomes Dos Santos AL, et al. Factors affecting the physical stability (aggregation) of peptide therapeutics. Interface Focus. 2017;7(6):20170030. PubMed 29147559DOI
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